Detección del Amarillamiento Letal del Cocotero en híbridos resistentes en la plantación de Salado Lis lis (Atlántida, Honduras), comparando sistemas de detección del fitoplasma en dos tipos de tejido y con tres ¨primers¨ para PCR.

dc.contributor.authorGarcía Z., Andrés F.spa
dc.contributor.colaboratorDoyle, Maríaspa
dc.contributor.colaboratorBustamante, Mariospa
dc.contributor.colaboratorDuarte, Odilospa
dc.coverage.spatialZamoranospa
dc.date.accessioned2014-02-21T16:21:57Z
dc.date.available2014-02-21T16:21:57Z
dc.date.issued2002
dc.description97 p.spa
dc.description.abstractHonduras es el foco de infección de la enfermedad del Amarillamiento Letal del Cocotero (ALC) en Centroamérica. Antes de que llegara la enfermedad se producían cerca de 29 millones de nueces en un área de 6,000 ha que generaba 30 millones de lempiras anuales. En la actualidad la producción, que estaba en manos de pequeños productores, ha declinado en 80-90%. El ALC ataca más de 30 especies de palmáceas, es causado por un fitoplasma y transmitido por el homóptero, Myndus crudus. Los objetivos fueron continuar con las evaluaciones de la causa de la alta mortalidad de las variedades resistentes a la enfermedad del ALC, en la plantación del Salado Lis lis (SLL) y en otras regiones afectadas por la enfermedad; y optimizar la detección del ADN del fitoplasma utilizando dos tipos de tejido: inflorescencia y tronco y tres ¨primers¨. Aparte de SLL se tomaron muestras en otras áreas afectadas por el ALC en Atlántida (Salado Barra, CADESCA y Triunfo de la Cruz) y Colón (San Antonio y Cusuna). Se hicieron seis muestreos y se tomaron 85 muestras de tronco y 57 de inflorescencia. En el laboratorio se hicieron dos tipos de extracción de ADN: una gran escala (5 g) y otra mini extracción (0.5 g); se utilizó la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) para detectar la presencia del ADN del agente causal, usando tres ¨primers¨: el universal para los fitoplasmas (P1/P7), el específico para el fitoplasma causante del ALC (LYR1/LYF1) y el grupo específico (¨nested¨ PCR). Se midió el porcentaje de muestras positivas, la evolución de la severidad y las concentraciones de ADN total. Se encontró mayor concentración de ADN total en las muestras de inflorescencia y cuando se extrajo a gran escala. Se obtuvieron más muestras positivas usando P1/P7 y LYF1/LYR1 con tejido de inflorescencia que con el tronco. Usando ¨nested¨ PCR se obtuvo mayor porcentaje de detección debido a que ¨nested¨ PCR es más sensible. Las plantas PCR positivas con ¨nested¨ PCR no presentaron síntomas y las PCR negativas estaban muriendo, esto indica que aunque el fitoplasma estaba presente, las plantas no estaban muriendo de ALC. Se recomienda continuar con las evaluaciones de las muestras de este trabajo y de otros híbridos replantados en Honduras. Para obtener mejores resultados se recomiendo usar los tres ¨primers¨ y varios tipos de tejido de la misma planta.spa
dc.description.tableofcontents1. Índice de cuadros 2. Índice de figuras 3. Índice de anexos 4. Introducción 5. Revisión de literatura 6. Materiales y métodos 7. Resultados y discusión 8. Conclusiones 9. Recomendaciones 10. Bibliografía 11. Anexosspa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/11036/2184
dc.language.isospaspa
dc.publisherEscuela Agrícola Panamericana, El Zamoranospa
dc.rightsCopyright, Escuela Agrícola Panamericana, 2014spa
dc.rights.accessrightsopenAccessspa
dc.rights.urihttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/esspa
dc.subjectCocos nuciferaspa
dc.subjectPCR.spa
dc.subjectSeveridadspa
dc.subjectVariedades resistentesspa
dc.titleDetección del Amarillamiento Letal del Cocotero en híbridos resistentes en la plantación de Salado Lis lis (Atlántida, Honduras), comparando sistemas de detección del fitoplasma en dos tipos de tejido y con tres ¨primers¨ para PCR.spa
dc.typeTesisspa
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